Tatsächlich wurde von Ivanov et al. [33] mittels NMR Methionin als das primäre Ziel im HSA bestätigt. Sie identifizierten Methionin (nicht dagegen Cystein) als die hauptsächliche schwefelhaltige Bindungsstelle bei der Interaktion von Cisplatin mit verschiedenen Arten von Albumin. In derselben Arbeit wurde ein an der Bildung eines S,N-Makrochelats beteiligter stickstoffhaltiger Ligand entdeckt. Andererseits
wurde mittels NMR kein Beleg dafür gefunden, dass Histidinreste bei der Bindung von Cisplatin an Albumin als N-Donoren eine Rolle spielen. Andere Proteine, die im Hinblick auf die Bindungsrate an Cisplatin untersucht wurden, waren Myoglobin, Ubiquitin, Metallothionein und noch einmal Transferrin [6]. Die Kinetik der Bindung von Cisplatin an zelluläres Metallothionein war pseudo-erster Ordnung und die
Geschwindigkeitskonstante Seliciclib betrug 6,3 x 10-4/s 1 (τ1/2 = 18 min). Cox et al. [34] dagegen wiesen durch NMR-Messungen einen im Wesentlichen zweiphasigen kinetischen Prozess für die Reaktion zwischen Cisplatin und Apotransferrin nach. Sie schlugen vor, dass zelluläres Metallothionein erhebliche Mengen an Cisplatin abfangen kann und deshalb wesentlich zur Resistenz gegen Cisplatin beitragen kann. Ähnliche Interaktionen mit Albumin wurden auch für Pt-haltige Medikamente der dritten Generation wie z. B. Oxaliplatin gezeigt [50]. Dieser Wirkstoff wird zunächst durch Selleckchem isocitrate dehydrogenase inhibitor sequenzielle Abspaltung des Oxalat-Liganden in eine „Pt-CHXN”-Spezies [CHXN = (1R,2R)-Cyclohexan-1,2-diamin] überführt. Der aktive Metabolit „Pt-CHXN” reagiert
Thalidomide rasch mit Schwefelfunktionen in kleinen Biomolekülen wie Glutathion, Cystein und Methionin und daraufhin mit Proteinen, Albumin und γ-Globuline, unter Ausbildung einer kovalenten Bindung [6]. Cisplatin und Carboplatin wurden auch im Hinblick auf ihre Reaktivität mit S-haltigen Liganden getestet, insbesondere mit L-Methionin (L-Met). Zur Trennung und Identifizierung der Pt-Spezies wurde LC-MS eingesetzt. Die endgültigen Reaktionsprodukte, [(NH3)2(Met)]Pt und zwei Isomere, [(Met)2]Pt, waren in beiden Fällen identisch (Cisplatin und Carboplatin) [35]. Die Isomere wiesen unterschiedliche chromatographische Retentionszeiten auf. In Gegenwart einer Natriumchloridlösung (150 mM) reagierte sowohl Carboplatin als auch Cisplatin mit L-Met zu fünf Methionin-Platin-Addukten. Dieser Befund stützte Ergebnisse von Studien anderer Arbeitsgruppen, denen zufolge Carboplatin in diesem Medium in Cisplatin umgewandelt wird [22]. Weitere Untersuchungen konzentrierten sich auf Oxaliplatin. Luo et al. [36] beschrieben eine HPLC-Methode zur Untersuchung der Biotransformationsprodukte von Oxaliplatin unter Verwendung von 3H-markiertem Oxaliplatin und 35S-markierten Nukleophilen (z. B.